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Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4  (Synonyms: LPS, from Escherichia coli (O111:B4))

目录号: HY-D1056A1
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Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4 (LPS, from Escherichia coli (O111:B4)) 是从大肠杆菌 (E. coli O111:B4) 中提取的脂多糖内毒素和 TLR-4 激活剂,是一种 S (smooth) 型 LPS。Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 具有典型的 3 部分结构:O 抗原、R3 型核心寡糖和脂质 A。Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 激活免疫细胞的 TLR-4,可引起显著胃部疾病。Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 可用于诱导细胞炎症和动物炎症相关模型
建议配制 ≥2 mg/mL 母液,并保证充分混合溶解。由于 LPS 具有吸附特性,分装保存时需使用低吸附离心管

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Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4

Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4 Chemical Structure

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生物活性

Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4 (LPS, from Escherichia coli (O111:B4)) are endotoxins and TLR4 activators extracted from Escherichia coli (E. coli O111:B4) and are classified as S (smooth) type LPS. Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 possess the typical three-part structure: O-antigen, R3-type core oligosaccharide, and lipid A. Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 activate TLR-4 in immune cells and can cause significant gastric diseases. Lipopolysaccharides (LPS), from E. coli O111:B4 can be used to induce cellular inflammation and establish animal models related to inflammation[1][2][3][4][5][6][7][8][9].
It is recommended to prepare a stock solution of ≥2 mg/mL and ensure that it is fully mixed and dissolved. Due to the adsorption characteristics of LPS, low adsorption centrifuge tubes should be used for aliquoting and storage.

IC50 & Target

TLR-4[2]

体外研究
(In Vitro)

Note:
1. 请勿仅参考一篇文章来确定实验条件。建议在正式实验前,通过设置浓度和时间梯度确定最佳实验条件 (不同炎症指标出现峰值对应 LPS 处理的时间和浓度不尽相同)。
2. 为了保持 LPS 的完整性,建议将 LPS 溶液存放在硅烷化容器中。因为 LPS 可以粘附在塑料和某些类型的玻璃上,尤其是在浓度低于 0.1 mg/mL 时。如果 LPS 浓度超过 1 mg/mL,这种吸附作用相对较小,建议配制 ≥2 mg/mL 母液,并充分涡旋震荡 10 分钟以上,必要时辅助超声,保证充分混合溶解。如果使用玻璃容器,请确保使用前充分混合至少 30 分钟,以重新溶解任何吸附在管壁的 LPS。
3. LPS 是一种能在溶液中形成不同尺寸胶束的分子,分子量不固定,储备液及工作液可直接配制成质量浓度 (mg/mL, μg/mL, etc.)
4. LPS 溶于水或 PBS 后可能会观察到均匀的浑浊溶液,如需过滤除菌,请勿直接过滤储备液,建议稀释成工作液之后用 0.22 μm 的滤膜过滤除菌

LPS 是革兰氏阴性细菌的主要毒性成分,可激活免疫系统的致病相关分子模式 (PAMP) 和诱导细胞分泌迁移体。LPS 可被 TLR4 识别并激活先天免疫系统,随后促进 NF-κB 的活化和促炎性细胞因子的产生,常用于免疫细胞的刺激、激活、分化实验。
不同的种类细菌会表达不同的结构和生物活性的 LPS。LPS 一般分为两种构型:R (rough) 型和 S (smooth) 型。其中 S 型 LPS 包含典型的 3 部分结构:O-抗原 (O-antigen) (重复寡糖单位的血清特异性多糖)、核心寡糖 (core) (C9 型非重复低聚糖) 和脂质 A (Lipid A) (LPS 的毒性成分)。R 型则不包含 O-抗原,表达粗糙型 LPS。O-抗原的缺乏可影响免疫细胞识别 LPS 的过程。
E. coli 表达 4 种 LPS 血清型:O111:B4,O55:B5,O127:B8,O128:B12。E. coli 0111:B4 菌株表达的 LPS 是已知可引起显著胃部疾病的致病性大肠埃希菌血清型,是文献中引用最多的 LPS 菌株。E. coli 0111:B4 来源的 LPS 可诱导人巨噬细胞 (M1) 极化[5]

1. 诱导细胞炎症模型[6][7]
致病原理
LPS 通过与细胞表面的 TLR4-MD-2 复合物结合,激活 MyD88 依赖和非依赖的信号通路,促使 NF-κB 等转录因子入核,引发炎症相关基因表达,致使细胞发生炎症反应。
具体造模方法
Cell: Macrophages, tumor cells, glial cells and so on.
Administration: 0.1-10 μg/mL • 1-24 h
Note
(1) 在正式实验前,应根据细胞系和 LPS 来源等查找相关参考文献,进行浓度和时间梯度的筛选以确定最优的实验方案。
(2) LPS 刺激细胞不一定会引起细胞死亡,因此不宜仅仅通过检测细胞活力来确定 LPS 造模浓度和时间,建议检测多个炎症因子的表达和分泌。
(3) 在 LPS 刺激细胞的过程中,应定期观察细胞的形态变化,过高浓度可能引发细胞毒性,过低浓度则可能无法有效损伤细胞。
(4) 一定浓度的 DMSO 可显著抑制 LPS 诱导的炎症反应,建议用 PBS 或 ddH2O 溶解。
(5) 在体外炎症模型构建研究中,Lipopolysaccharides, from E. coli O55:B5 (HY-D1056) 和 Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1) 是应用最为广泛的 LPS,推荐使用!
造模成功指标
上清或细胞中炎症因子:IL-1β、IL-6 及 TNF-α 等分泌和表达增加。
NO 释放增加。
炎症基因:iNOS、NF-kB 及 NLRP3 等表达增加。
拮抗产品: /

MCE has not independently confirmed the accuracy of these methods. They are for reference only.

体内研究
(In Vivo)

注意
请勿仅参考一篇文章来确定实验条件。建议在正式实验前,通过预实验确定最佳实验条件 (动物品系、年龄、剂量、频率及周期、检测时间及指标等)。

LPS 构建体内动物模型指南

动物模型 推荐 LPS 类型 参考剂量和管理方式 (以小鼠为例) 推荐检测指标
脓毒症 (休克) 模型 [PMID: 26440998; 27127234; 19529910] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
LPS, from E. coli O127:B8 (HY-D1056A2)
2.5-10 mg/kg;腹腔注射 炎性介质评估:TNF-α;IL-6;IL-1β 等 (ELISA 检测血清/血浆)。
组织病理学评估:肾脏 HE 染色,肾小球细胞增生、上皮细胞变性坏死、间质炎症细胞浸润等。
其它:血清 Scr、BUN (肾脏滤过功能 marker)。
心脏功能障碍/心肌炎模型 [PMID: 32896106; 36593471] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
10 mg/kg;腹腔注射 炎性介质评估:TNF-α;IL-6;IL-1β 等 (ELISA 检测血清/血浆)。
组织病理学评估:心脏HE 染色,心肌纤维排列紊乱,心肌组织破坏,轮廓不清,心肌溶解、间质水肿、充血,炎性细胞浸润等。
其它:心脏超声检测功能障碍。
急性肺损伤模型 [PMID: 31595149; 26888116; 20975550] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
LPS, from Klebsiella pneumonia (HY-D1056B3)
0.2-15 mg/kg;气管内给药 炎性介质评估:TNF-α;IL-6;IL-1β 等 (ELISA/qPCR 检测 BALF 或肺组织)。
组织病理学评估:肺 HE 染色,肺泡内白细胞浸润,肺泡壁增厚,斑块状出血及间质水肿等。
其它:肺干/湿比 (D/W ratio)。
急性肝损伤模型 [PMID: 27127234; 36849063] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
5-50 μg/kg + D-GalN (200-400 mg/kg); 腹腔注射 炎性介质评估:TNF-α;IL-6;IL-1β 等 (ELISA/qPCR检测血清/肝组织)。
组织病理学评估:肝 HE 染色,肝结构紊乱、出血斑块,炎症细胞浸润等。
其它:血清 ALT,AST (肝损伤 marker)。
牙周炎模型 [PMID: 23167849; 27987467] LPS, from P. gingivalis (HY-D1056D)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
4-10 μg;分 2-4 次; 口腔牙周组织注射 炎性介质评估:iNOS;COX-2;TNF-α;IL-6 等 (qPCR 检测牙龈组织)。
组织病理学评估:牙龈/牙槽骨组织 HE 染色,炎症细胞浸润,胶原纤维束在组织-根界面附近分布松散。
其它:牙龈组织免疫细胞数量(流式)。
脑炎模型 [PMID: 35858866; PMID: 36240654] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from P. gingivalis (HY-D1056D)
3-5 mg/kg;腹腔注射 炎性介质评估:IL-1β;IL-6;TNF-α 等 (qPCR/WB 检测脑/海马组织)。
免疫荧光检测:IBA-1 (小胶质细胞 marker);GFAP (星形胶质细胞 marker);Siglec-E 等。
抑郁症模型 [PMID: 31327964; 38677623] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
5-10 mg/kg;腹腔注射 炎性介质评估:IL-1β;NLRP3;Caspase-1 等 (qPCR/WB 检测海马/皮层);IL-6;IL-1β;TNF-α 等 (ELISA 检测海马/皮层/血清)。
免疫荧光检测:IBA-1;GFAP 等。
行为学检测:尾悬实验和强迫游泳实验等:具有较长的不动时间,不动潜伏期缩短。
帕金森模型 [PMID: 35065246; 30455692] LPS, from E. coli O111:B4 (HY-D1056A1)
LPS, from P. gingivalis (HY-D1056D)
2-5 μg; 黑质注射 炎性介质评估:iNOS;COX-2 等 (WB 检测黑质);TNF-α;IL-1β;IL-6 等 (ELISA/qPCR 检测黑质)。
免疫荧光检测:IBA-1;GFAP 等。
行为学检测:旋转行为测试,转圈数明显增多;旷场实验,运动迟缓,对新环境探索欲降低,更倾向于在周边区域活动;转棒实验:停留时间缩短,掉落时间提前。
其它:Cx43;酪氨酸羟化酶 (WB 检测黑质)。
Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4 可用于诱导细胞和动物炎症相关模型,其中,动物模型包括脓毒症 (休克) 模型、心脏功能障碍/心肌炎模型、急性肺损伤模型、急性肝损伤模型、脑炎模型和抑郁症模型等。以下为几个模型举例:
1. 诱导脓毒症 (休克) 模型[8]
致病原理
LPS 进入机体后被 TLR4 识别,激活相关信号通路,引发炎症介质大量释放,进而导致炎症反应失控、血管内皮损伤、凝血系统激活等一系列病理生理变化,最终诱导脓毒症 (休克) 发生。
具体造模方法:
C57BL/6 mice • 2.5-10 mg/kg • i.p.
Note
(1) 在 LPS 诱导动物模型前,应根据实验目的、动物类型等,查找相关参考文献,进行预实验,以确定最优的实验方案。
(2) 在 LPS 给药后,不同的炎症因子,其含量峰值出现的时间点可能不一致,建议根据参考文献确定实验方案,以及预实验时应多选几个时间点检测。
(3) LPS 需避光保存,并避免反复冻融。
造模成功指标
血清/血浆中 TNF-α;IL-6;IL-1β 等分泌增加。
肾脏 HE 染色:肾小球细胞增生、上皮细胞变性坏死、间质炎症细胞浸润等。
Scr、BUN (肾脏滤过功能 marker) 水平升高。
拮抗产品: /
2. 诱导急性肝损伤模型[8][9]
致病原理
LPS 常与 D-半乳糖胺 (D-GalN) 联用,以诱导急性肝损伤模型。LPS 激活免疫系统引发炎症反应,D-半乳糖胺使肝细胞代谢紊乱、对损伤因素敏感性增加,二者协同作用,通过炎症介质攻击等机制导致急性肝损伤。
具体造模方法
C57BL/6 mice • 5-50 μg/kg + D-GalN (200-400 mg/kg) • i.p.
造模成功指标
血清和肝组织中 TNF-α、IL-6、IL-1β 分泌或表达增加。
肝 HE 染色:肝结构紊乱、出血斑块,炎症细胞浸润等。
ALT,AST (肝损伤 marker) 明显升高。
同类产品:Lipopolysaccharides, from E. coli O55:B5 (HY-D1056)
拮抗产品:/

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性状

固体

颜色

White to off-white

中文名称

脂多糖,来源于大肠杆菌O111:B4

运输条件

Room temperature in continental US; may vary elsewhere.

储存方式
Powder -20°C 3 years
4°C 2 years
In solvent -80°C 6 months
-20°C 1 month
溶解性数据
细胞实验: 

H2O 中的溶解度 : 1 mg/mL (超声助溶 (<60°C); DMSO can inactivate Lipopolysaccharides, from E. coli O111:B4's activity)

  • 摩尔计算器

  • 稀释计算器

Mass (g) = Concentration (mol/L) × Volume (L) × Molecular Weight (g/mol)

质量
=
浓度
×
体积
×
分子量 *

Concentration (start) × Volume (start) = Concentration (final) × Volume (final)

This equation is commonly abbreviated as: C1V1 = C2V2

浓度 (start)

C1

×
体积 (start)

V1

=
浓度 (final)

C2

×
体积 (final)

V2

动物溶解方案计算器
请输入动物实验的基本信息:

给药剂量

mg/kg

动物的平均体重

g

每只动物的给药体积

μL

动物数量

由于实验过程有损耗,建议您多配一只动物的量
计算结果
工作液所需浓度 : mg/mL
您所需的储备液浓度超过该产品的实测溶解度,如有需要,请与 MCE 中国技术支持联系。
纯度 & 产品资料

参考文献
Help & FAQs
  • Do most proteins show cross-species activity?

    Species cross-reactivity must be investigated individually for each product. Many human cytokines will produce a nice response in mouse cell lines, and many mouse proteins will show activity on human cells. Other proteins may have a lower specific activity when used in the opposite species.

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